技術(shù)領(lǐng)域
本發(fā)明屬于分子生物學(xué)和生物信息學(xué)領(lǐng)域,具體涉及基因單堿基突變的檢測(cè)。
技術(shù)領(lǐng)域
本發(fā)明屬于分子生物學(xué)和生物信息學(xué)領(lǐng)域,具體涉及基因單堿基突變的檢測(cè)。
背景技術(shù):
目前,在家畜的遺傳育種中,應(yīng)用分子標(biāo)記的現(xiàn)代育種技術(shù)是加快良種選育和提高種群遺傳品質(zhì),從而增加家畜生產(chǎn)性能先進(jìn)的有效的方法。應(yīng)用分子標(biāo)記育種首先是在DNA水平上篩查和檢測(cè)牛經(jīng)濟(jì)性狀密切相關(guān)的遺傳標(biāo)記;其次是建立其基因多態(tài)性的快速檢測(cè)方法;然后實(shí)現(xiàn)遺傳標(biāo)記輔助選擇和實(shí)現(xiàn)早期診斷選擇。
SNP的檢測(cè)方法有很多種,大多數(shù)方法以聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)為主要基礎(chǔ),利用堿基差異造成的DNA片段的各種差異來(lái)進(jìn)行SNP檢測(cè)和分析,如下所述:(1)單鏈構(gòu)象多態(tài)性。實(shí)驗(yàn)證明300bp以下的DNA片段中的單堿基突變,單鏈構(gòu)象多態(tài)性檢測(cè)方法檢出率幾乎100%,但300bp以上的片段檢出率則不高,甚至還會(huì)出現(xiàn)漏檢的情況;此外,其操作繁瑣,需要特殊儀器;所用試劑包含有硝酸銀和甲醛,易對(duì)人體健康造成危害;PCR產(chǎn)物電泳之前需進(jìn)行特殊處理;電泳溫度高低和凝膠濃度大小等均可影響其靈敏度的高低;實(shí)驗(yàn)重復(fù)效果不好。(2)創(chuàng)造酶切位點(diǎn)PCR法。其關(guān)鍵環(huán)節(jié)在于錯(cuò)配引物的設(shè)計(jì),引物只能固定在突變位點(diǎn)的鄰近序列設(shè)計(jì)。創(chuàng)造酶切位點(diǎn)PCR法穩(wěn)定性高,結(jié)果準(zhǔn)確,但是由于人為地引入了錯(cuò)配堿基,與正常引物相比,其擴(kuò)增難度很高,擴(kuò)增效率大大降低,將會(huì)直接影響到酶切的結(jié)果。(3)綜上所述,以上方法均不是一種檢測(cè)SNPs的理想的遺傳標(biāo)記方法。限制性片段長(zhǎng)度多態(tài)性,此檢測(cè)方法結(jié)合PCR產(chǎn)物直接測(cè)序法,檢測(cè)單堿基突變的效率可以達(dá)到100%。此方法的關(guān)鍵是使用PCR將編碼區(qū)域的序列在不同個(gè)體當(dāng)中進(jìn)行擴(kuò)增,擴(kuò)增的產(chǎn)物進(jìn)行測(cè)序,測(cè)序結(jié)果與原來(lái)序列進(jìn)行比對(duì)分析,以準(zhǔn)確確定堿基突變的位置。PCR-RFLP具有快速,準(zhǔn)確,方法簡(jiǎn)便,重復(fù)性高,成本低廉的優(yōu)點(diǎn),大量樣本的分析可以用此種方法。
CSRP家族成員在肌肉生長(zhǎng)發(fā)育過(guò)程中均起重要作用。研究表明CSRP3基因(又叫肌肉特異性LIM蛋白(muscleLIMprotein,MLP)僅在肌中表達(dá),且其表達(dá)與肌分化過(guò)程相一致,是一個(gè)肌發(fā)生的正調(diào)節(jié)因子(Arberetal.,1994)。另有研究表明,CSRP3基因編碼產(chǎn)物MLP可以通過(guò)一種物理的方式與肌肉組織基本的螺旋一環(huán)一螺旋(bHLH)轉(zhuǎn)錄因子發(fā)生作用,這種作用具有高度的特異性,即MLP不與非肌源性bHLH蛋白或成肌增強(qiáng)因子2發(fā)生作用(Kongetal.,1997)。MLP可能以共激活因子的形式促進(jìn)肌源性bHLH蛋白與特定DNA調(diào)控元件的結(jié)合(Kongetal.,1997)。由此,我們推測(cè)該基因可能對(duì)牛肌肉生長(zhǎng)發(fā)育產(chǎn)生影響,值得深入研究。但是到目前為止,有關(guān)牛CSRP3基因的研究尚未見(jiàn)報(bào)道。
技術(shù)實(shí)現(xiàn)要素:
本發(fā)明的目的在于提供一種牛CSRP3基因單堿基突變的檢測(cè)方法,該檢測(cè)方法操作簡(jiǎn)單易行,成本低,時(shí)間短,重復(fù)性高,檢測(cè)結(jié)果準(zhǔn)確,極容易判型,便于推廣應(yīng)用。
為了實(shí)現(xiàn)上述發(fā)明目的,本發(fā)明是通過(guò)以下技術(shù)方案來(lái)實(shí)現(xiàn),該方法包括以下步驟:
(1)根據(jù)牛CSRP3基因在基因組序列中的位置,設(shè)計(jì)一對(duì)基因特異性引物;
所述的一對(duì)基因特異性引物如下:
上游引物CSRP3-GSP-F:5'-CACAGGTCAGGAATCAAAG-3'19bp;
下游引物CSRP3-GSP-R:5'-GCAAAGGTCAAACAATAGG-3'19bp。
(2)以包含牛CSRP3基因的DNA序列為模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增;
所述PCR反應(yīng)體系為15μL,其中包括2×ReactionMix7.5μL,ddH2O6.1μL,上游引物CSRP3-GSP-F0.3μL,下游引物CSRP3-GSP-R0.3μL,GoldenDNApolymerase0.3μL,含CSRP3基因序列的DNA模板0.5μL。
以上各成分混勻后,進(jìn)行分裝,每管總體積15μL。放入PTC-200PCR擴(kuò)增儀進(jìn)行PCR反應(yīng),PCR程序?yàn)椋?5℃預(yù)變性5min,94℃變性30s,60℃退火40s,72℃延伸40s,共計(jì)36個(gè)循環(huán),72℃充分延伸10min,最后16℃保存待用。
(3)通過(guò)瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)牛CSRP3基因單堿基突變,當(dāng)在PCR產(chǎn)物中加入限制性?xún)?nèi)切酶HhaI進(jìn)行消化后,經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行片段大小分離與鑒定,電泳結(jié)果發(fā)現(xiàn)3種不同條帶,分別對(duì)應(yīng)著3種不同基因型(野生純合基因型AA,突變純合基因型GG,雜合基因型AG)。隨后,挑取不同帶型送測(cè)序驗(yàn)證,利用生物信息學(xué)方法,將測(cè)序結(jié)果與NCBI公布的序列進(jìn)行比較,發(fā)現(xiàn)該CSRP3基因第2外顯子區(qū)域即第14832位發(fā)生了A>T突變。電泳結(jié)果與測(cè)序結(jié)果相一致。
步驟(3)所述的檢測(cè)牛CSRP3基因單堿基突變的PCR-RFLP方法,所述的瓊脂糖凝膠濃度為3%。
本發(fā)明的技術(shù)方案還在于采用了一種牛CSRP3基因單堿基突變檢測(cè)方法的應(yīng)用,所述的檢測(cè)方法可用于牛的輔助選擇和良種選育。通過(guò)將不同基因型與牛的不同性狀進(jìn)行關(guān)聯(lián)分析,從而確定基因與性狀的對(duì)應(yīng)關(guān)系,用于牛的良種選育。
步驟(5)所述的不同性狀包括包括生長(zhǎng)和胴體性狀。
本發(fā)明的檢測(cè)方法先用PCR擴(kuò)增,然后用限制性?xún)?nèi)切酶HhaI直接消化PCR產(chǎn)物,消化后的產(chǎn)物直接跑瓊脂糖凝膠電泳。根據(jù)電泳結(jié)果,挑取不同帶型送測(cè)序驗(yàn)證,便可鑒定秦川肉牛和中國(guó)荷斯坦奶牛CSRP3基因第14832位的單堿基突變情況。該檢測(cè)方法操作簡(jiǎn)單易行,成本低,時(shí)間短,重復(fù)性高,檢測(cè)結(jié)果準(zhǔn)確,極容易判型,便于推廣應(yīng)用。
附圖說(shuō)明
圖1為牛血液基因組DNA電泳檢測(cè)圖。
圖2為牛CSRP3基因第2外顯子區(qū)域607bpPCR產(chǎn)物2%瓊脂糖凝膠電泳圖。
圖3為秦川肉牛CSRP3基因第2外顯子區(qū)域607bpPCR產(chǎn)物經(jīng)HhaI酶切消化后的3%瓊脂糖凝膠電泳圖。
圖4為中國(guó)荷斯坦奶牛CSRP3基因第2外顯子區(qū)域607bpPCR產(chǎn)物經(jīng)HhaI酶切消化后的3%瓊脂糖凝膠電泳圖。
圖5為牛CSRP3基因第2外顯子區(qū)域即g.14832位堿基突變位點(diǎn)野生純合AA基因型測(cè)序結(jié)果圖。
圖6為牛CSRP3基因第2外顯子區(qū)域即g.14832位堿基突變位點(diǎn)雜合AG基因型測(cè)序結(jié)果圖。
圖7為牛CSRP3基因第2外顯子區(qū)域即g.14832位堿基突變位點(diǎn)突變純合GG基因型測(cè)序結(jié)果圖。
圖8為牛CSRP3基因第2外顯子區(qū)域即g.14832位堿基突變位點(diǎn)的DNA序列分析。
下面結(jié)合附圖說(shuō)明和發(fā)明人給出的最佳實(shí)施方式對(duì)本發(fā)明做進(jìn)一步的詳細(xì)說(shuō)明,本發(fā)明的實(shí)施例部分包括實(shí)施例,驗(yàn)證實(shí)施例,應(yīng)用實(shí)施例,各實(shí)施例是為了更清楚的說(shuō)明本發(fā)明,以使公眾對(duì)發(fā)明內(nèi)容從整體上得到充分的理解,而并非對(duì)本發(fā)明保護(hù)范圍的限定。
具體實(shí)施方式
以下實(shí)施例中所用的主要試劑來(lái)源:
一、常用試劑和溶液的配制
試劑和溶液的配制方法具體如下:
(1)ACD抗凝劑
檸檬酸2.4g,檸檬酸鈉6.6g,葡萄糖7.35g,加水定容至50mL蒸餾水中,采集血樣時(shí),在新鮮血液中按一定比例加入ACD。
(2)PBS緩沖液
NaCl4g,KCl0.1g,Na2HP040.72g,KH2P040.12g,加滅菌過(guò)的蒸餾水定容至500mL,用pH試紙調(diào)pH至7.4,120℃高壓滅菌20min。
(3)DNA抽提液
分別量取1mmol/LTris·Cl100mL,5mmol/LNaCl40mL,0.5mmol/LEDTA400mL,10%十二烷基磺酸鈉100mL,定容至1000mL。pH值用NaOH調(diào)為8.0。
(4)蛋白酶K
加5mL滅菌蒸餾水,稀釋成20mg/mL,放入-20℃保存?zhèn)溆谩?/p>
(5)70%乙醇
無(wú)水乙醇350mL,加蒸餾水150mL定容至500mL。
(6)10×TBE緩沖液
稱(chēng)取Tris54g,硼酸27.5g,EDTA·Na23.72g,加熱混勻,保存?zhèn)溆谩?/p>
二、軟件工具
(1)引物設(shè)計(jì)軟件
PrimerPremier5.0軟件自行設(shè)計(jì)上下游引物;
(2)序列分析軟件
DNAStar7.10軟件進(jìn)行序列比對(duì)和突變位點(diǎn)分析;
(3)統(tǒng)計(jì)分析軟件
EXCELL用于數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì);SPASS17.0進(jìn)行各性狀指標(biāo)的統(tǒng)計(jì)和分析,以及差異顯著性檢驗(yàn)。
實(shí)施例1:牛血液樣本采集和DNA提取以及構(gòu)建混合DNA池
一、牛血液樣本采集
2008年9月至2012年6月,分別在陜西省秦寶牧業(yè)發(fā)展有限公司和西安草灘奶牛場(chǎng)采集血樣,先后共采集秦川肉牛血樣404份,中國(guó)荷斯坦奶牛血樣150份。50mL全血中加入1.5mL的ACD抗凝劑,混勻后置于冰盒中帶回實(shí)驗(yàn)室,存放于-80℃保存。
二、牛血液基因組DNA提取
血液基因組DNA提取過(guò)程具體步驟如下:
(1)將血樣在半凍融狀態(tài)下,吸1000μL血液于2mL的滅菌離心管中;
(2)再向滅菌管中加入PBS緩沖液1000μL,使總體積達(dá)到2000μL,輕搖10min;之后4℃,12000rpm離心10min;
(3)棄上清,重復(fù)上面的步驟2-3次,直到上清液變清亮;
(4)分別加DNA抽提液800μL,蛋白酶K15μL,混勻后,放入恒溫水浴箱中56℃過(guò)夜消化蛋白質(zhì)等,當(dāng)溶液變得澄清透明時(shí),便可拿出;
(5)加入1000μL的Tris飽和酚,放在冰上溫和搖動(dòng)10min;之后4℃,12000rpm離心10min;用移液器小心吸取上清液到滅菌離心管中;
(6)加入500μL的Tris飽和酚和500μL的氯仿,放在冰上溫和搖動(dòng)10min;之后4℃,12000rpm離心10min;用移液器小心吸取上清液到另一個(gè)滅菌的離心管中;
(7)加入1000μL的氯仿,放在冰上溫和搖動(dòng)10min;之后4℃,12000rpm離心10min;用移液器小心吸取上清液到另一個(gè)滅菌的離心管中;
(8)加入2倍體積的無(wú)水乙醇,上下顛倒數(shù)次使DNA析出;之后4℃,12000rpm離心10min,棄去乙醇;
(9)加入70%的乙醇1mL,溫和搖動(dòng)10min;之后4℃,12000rpm離心10min,重復(fù)漂洗一次;
(10)室溫下讓乙醇揮發(fā)干凈,加入一定量滅菌水溶解DNA,完全溶解后測(cè)定濃度和純度。
三、紫外分光光度計(jì)測(cè)定DNA濃度和純度
以80ng/μL作為標(biāo)準(zhǔn)DNA濃度,若測(cè)得的DNA濃度在80ng/μL左右,說(shuō)明DNA濃度符合實(shí)驗(yàn)要求;濃度過(guò)高的需要稀釋成標(biāo)準(zhǔn)濃度;濃度過(guò)低的需重新提取DNA。
若A260nm/A280nm比值在1.6~2.0之間時(shí),可判定DNA的純度基本符合要求。若A260nm/A280nm比值小于1.6或者大于2.0時(shí),可判定純度不符合要求。必須對(duì)樣品DNA做進(jìn)一步的純化,或重新提取DNA。
四、瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)提取DNA的質(zhì)量
(1)稱(chēng)取0.5g的瓊脂糖,轉(zhuǎn)入三角瓶中,再加入1×TBE20mL使其懸浮,微波爐加熱60秒,待溶液沸騰呈透明狀時(shí)拿出。
(2)將液體倒入制膠板中,插上梳子,待瓊脂糖完全冷卻凝固,拔掉梳子,將凝膠移入電泳槽中。
(3)向電泳槽中加入1×TBE緩沖液,使液面高出膠面5mm。
(4)取DNA樣品5μL,加3μL上樣緩沖液后,混勻上樣。
(5)120V電壓電泳30min。
(6)在凝膠成像系統(tǒng)上觀察,如果電泳條帶清晰而規(guī)則,沒(méi)有明顯拖尾現(xiàn)象,說(shuō)明提取的DNA效果較好,可以滿(mǎn)足實(shí)驗(yàn)需要,否則需重新提取相應(yīng)樣品的DNA。
五、構(gòu)建混合DNA池
本發(fā)明的詳細(xì)DNA池構(gòu)建方法如下:將提取的基因組DNA,用紫外分光光度計(jì)測(cè)量每個(gè)DNA樣品濃度各3次,取平均值,再將樣品稀釋到終濃度為80ng/μL,20個(gè)DNA樣品中各取2μL快速構(gòu)建成DNA池。以池中DNA樣品為模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增,并送去測(cè)序,快速篩查基因的SNPs。
結(jié)果:牛血液基因組DNA的電泳檢測(cè)結(jié)果見(jiàn)圖1。
實(shí)施例2:牛CSRP3基因第2外顯子的PCR擴(kuò)增
一、引物設(shè)計(jì)
以NCBI數(shù)據(jù)庫(kù)中GenBank公布的牛(登錄號(hào):AC_000186.1)序列為參考,利用Premier5.0軟件設(shè)計(jì)牛CSRP3基因第2外顯子的PCR引物,其引物序列如下:
上游引物CSRP3-GSP-F:5'-CACAGGTCAGGAATCAAAG-3'19bp;
下游引物CSRP3-GSP-R:5'-GCAAAGGTCAAACAATAGG-3'19bp。
該引物對(duì)擴(kuò)增了牛CSRP3基因整個(gè)第2外顯子區(qū)域,片段大小為607bp。
二、PCR擴(kuò)增
(1)PCR反應(yīng)體系
PCR反應(yīng)體系采用混合加樣法,實(shí)驗(yàn)中我們通常是先計(jì)算出每一種成份所需要的量,然后再算出加樣總量,之后等量分裝到每一個(gè)PCR管,然后加
入模板DNA,再瞬時(shí)離心后進(jìn)行PCR擴(kuò)增。PCR反應(yīng)體系如表1。
表1PCR反應(yīng)體系
成分體積2×ReactionMix7.5μLddH2O6.1μL引物上游0.3μL引物下游0.3μLGoldenDNApolymerase0.3μL個(gè)體或混合DNA模板0.5μL總體積15μL
(2)PCR反應(yīng)程序
95℃預(yù)變性5min,94℃變性30s,60℃退火40s,72℃延伸40s,共36個(gè)循環(huán),72℃充分延伸10min,最后16℃保存待用。PCR反應(yīng)程序見(jiàn)表2。
表2PCR反應(yīng)程序
步驟溫度時(shí)間預(yù)變性95℃5min變性94℃30s退火60℃40s延伸72℃40s充分延伸72℃10min保存待用16℃Forever
結(jié)果:PCR擴(kuò)增結(jié)果見(jiàn)圖2。圖2為牛CSRP3基因第2外顯子區(qū)域607bpPCR產(chǎn)物2%瓊脂糖凝膠電泳圖。從左至右方向,泳道1表示MarkerI(自上而下分別代表600bp~100bp);泳道2~8為607bpPCR產(chǎn)物。
電泳結(jié)果表明:PCR片段的大小為607bp,與預(yù)期理論設(shè)計(jì)的片段大小完全一致。因此,成功擴(kuò)增出牛CSRP3基因第2外顯子區(qū)域DNA片段。
實(shí)施例3:生物信息學(xué)分析
(1)測(cè)序驗(yàn)證
分別以個(gè)體和混合DNA池中DNA為模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增,PCR產(chǎn)物點(diǎn)樣于1%的瓊脂糖凝膠,120V電壓電泳30min,核酸燃料染色,然后進(jìn)行切膠回收,回收后的產(chǎn)物送南京金斯瑞生物科技公司進(jìn)行正向測(cè)序,測(cè)序使用的是ABI3730型全自動(dòng)序列分析儀。
(2)篩查突變位點(diǎn)
根據(jù)個(gè)體和混合DNA池模板測(cè)序后的峰圖結(jié)果,以NCBI數(shù)據(jù)庫(kù)中GenBank公布的牛AC_000186.1序列為參考,利用DNAStar7.10軟件將測(cè)序后序列與公布的參考序列進(jìn)行DNA序列比對(duì)和突變位點(diǎn)分析,結(jié)果篩查到在基因組第14832位發(fā)生一處單堿基A>G突變,突變的具體位置見(jiàn)圖8。(圖8為牛CSRP3基因第2外顯子區(qū)域即g.14832位堿基突變位點(diǎn)的DNA序列分析。圖中的下劃線部分分別表示上下游引物F和R;灰色陰影部分為完整的第2外顯子區(qū)域;方框顯示的是g.14832位A>G堿基突變位點(diǎn)。)為進(jìn)一步驗(yàn)證堿基突變位點(diǎn)的變異情況,在404頭秦川肉牛群體和150頭中國(guó)荷斯坦奶牛群體中均進(jìn)行了下一步的應(yīng)用驗(yàn)證。
實(shí)施例4:牛CSRP3基因g.14832位的HhaI限制性?xún)?nèi)切酶消化
利用實(shí)施例2中的引物和PCR擴(kuò)增條件,對(duì)實(shí)施例1中秦川肉牛的404份和150份中國(guó)荷斯坦奶?;蚪MDNA進(jìn)行PCR擴(kuò)增,共獲得554份個(gè)體的牛CSRP3基因中包含g.14832A>G突變位點(diǎn)的DNA片段,然后利用如下方法進(jìn)行HhaI限制性?xún)?nèi)切酶消化,具體方法如下:
(一)PCR產(chǎn)物進(jìn)行HhaI限制性?xún)?nèi)切酶消化
(1)HhaI酶切消化體系
酶切前,先隨機(jī)進(jìn)行小樣本PCR擴(kuò)增產(chǎn)物的抽檢,目的是通過(guò)隨機(jī)抽檢的方式,檢驗(yàn)PCR產(chǎn)物是否擴(kuò)增出目的片段。
其次,在PCR產(chǎn)物中加入酶切反應(yīng)各個(gè)組分,進(jìn)行酶切消化反應(yīng),酶切體系如下:
表3HhaI限制性?xún)?nèi)切酶消化體系
組分體積HhaI1μL10×MBuffer2μLPCR產(chǎn)物≤1μg滅菌水upto20μL總體積20μL
(2)酶切反應(yīng)
將(1)中各成分混勻后,瞬時(shí)離心,放入37℃隔水式培養(yǎng)箱中反應(yīng)1小時(shí)。1小時(shí)后向PCR管中添加10×LoadingBuffer(使用時(shí)添加反應(yīng)液量的1/10),即可停止反應(yīng),進(jìn)行電泳。
(3)酶切產(chǎn)物的瓊脂糖凝膠電泳
A.裝板
事先將制膠板和梳子清洗干凈,晾干備用。
B.配膠
根據(jù)不同長(zhǎng)度的PCR擴(kuò)增片段配制適合濃度的膠。最適合的膠濃度是經(jīng)過(guò)多次的摸索條件得來(lái)的,根據(jù)實(shí)驗(yàn)經(jīng)驗(yàn),此實(shí)驗(yàn)中607bp長(zhǎng)度的片段適合的膠濃度為3%。
稱(chēng)取瓊脂糖0.9g,倒入三角錐形瓶中,同時(shí)加入1×TBE緩沖液30mL;之后,將三角錐形瓶放入微波爐中加熱1min至完全沸騰狀態(tài),隨后待溫度降至60度左右時(shí)加入核酸染料3μL。
C.倒膠
倒膠時(shí),注意不能產(chǎn)生氣泡,如果產(chǎn)生氣泡用白槍頭挑破或?qū)馀萏糁林颇z板的四周,之后立即插上梳子,要保證梳子齒和液面接觸處沒(méi)有氣泡,一旦產(chǎn)生氣泡要拔出重插。
D.靜置
靜置水平桌面上15min左右使之充分凝固。
E.準(zhǔn)備電泳
瓊脂糖凝固后即可拔出梳子,拔梳子時(shí)要用力均勻以保持膠孔的整齊。將瓊脂糖放入電泳槽中固定好,倒入1×TBE電泳緩沖液需高出膠面5mm,速度要慢,以免梳子孔中進(jìn)入氣泡,產(chǎn)生的大氣泡會(huì)使電泳條帶彎曲。
F.點(diǎn)樣
用微量加樣器把酶切消化產(chǎn)物按順序加到點(diǎn)樣孔中。由于邊緣效應(yīng)帶型不整齊,每塊板中最邊上的兩個(gè)孔最好不要點(diǎn)樣。
G.電泳
電壓調(diào)至120V,室溫電泳30min。
(二)凝膠成像系統(tǒng)照相分析
利用北京伯樂(lè)公司T2A型凝膠成像系統(tǒng)照相分析,并做好記錄和帶型統(tǒng)計(jì)。
牛CSRP3基因的g.14832位堿基發(fā)生A>G突變時(shí),PCR擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)HhaI酶切消化后產(chǎn)生不同的帶型。由于牛為二倍體,所以牛基因組的CSRP3基因的第14832位發(fā)生堿基突變后的瓊脂糖凝膠電泳結(jié)果為:如圖3所示,
從左至右方向,泳道1~7,10~11為野生純合AA基因型;泳道8~9為雜合AG基因型;泳道12為突變純合GG基因型;泳道13代表MarkerI。圖4中,從左至右方向,泳道1~12為野生純合AA基因型個(gè)體的酶切產(chǎn)物;泳道13代表MarkerI。
驗(yàn)證實(shí)施例:不同帶型個(gè)體PCR產(chǎn)物的測(cè)序驗(yàn)證
利用ABI3730型測(cè)序儀對(duì)不同帶型個(gè)體的PCR產(chǎn)物進(jìn)行正向測(cè)序,測(cè)序結(jié)果如圖4所示。箭頭的指示位置表示基因組第14832位堿基;圖5表示野生純合AA基因型測(cè)序結(jié)果;圖6表示雜合AG基因型測(cè)序結(jié)果;圖7表示突變純合GG基因型測(cè)序結(jié)果。
應(yīng)用實(shí)施例1:牛CSRP3基因g.14832位點(diǎn)的基因型頻率統(tǒng)計(jì)分析
根據(jù)實(shí)施4中的酶切電泳結(jié)果,統(tǒng)計(jì)秦川肉牛和中國(guó)荷斯坦奶牛共計(jì)554個(gè)體在g.14832位點(diǎn)的基因型頻率,統(tǒng)計(jì)結(jié)果如下:
表4牛CSRP3基因g.14832位點(diǎn)的基因型頻率統(tǒng)計(jì)分析
應(yīng)用實(shí)施例2:不同基因型與生長(zhǎng)和胴體性狀的關(guān)聯(lián)分析
生長(zhǎng)指標(biāo)包括:體高,體斜長(zhǎng),腰角寬;胴體性狀指標(biāo)包括:空腹24h宰前活重,胴體重,屠宰率;此數(shù)據(jù)資料在秦川肉牛屠宰前,由本實(shí)驗(yàn)室人員進(jìn)行當(dāng)天測(cè)量并記錄。測(cè)量工具為測(cè)杖、卷尺和鋼尺。
關(guān)聯(lián)分析結(jié)果見(jiàn)表5,實(shí)驗(yàn)采用SPSS17.0軟件對(duì)不同基因型與各性狀指標(biāo)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)和分析,以及差異顯著性檢驗(yàn)。
表5牛CSRP3因不同基因型與生長(zhǎng)和胴體性狀的關(guān)聯(lián)分析
注:A,B同一行中肩標(biāo)字母相同者表示差異不顯著(P>0.05),不同字母表示差異極顯著(P<0.01);
a,b同一行中肩標(biāo)字母相同者表示差異不顯著(P>0.05),不同字母表示差異顯著(P<0.05)。
關(guān)聯(lián)結(jié)果表明,在體高和體斜長(zhǎng)兩個(gè)生長(zhǎng)性狀指標(biāo)上,3種基因型之間無(wú)顯著差異(P>0.05);腰角寬指標(biāo)上,AG基因型個(gè)體與GG基因型個(gè)體達(dá)到差異顯著水平(P<0.05)。在胴體性狀中,空腹24h宰前活重指標(biāo)上,不同基因型之間未達(dá)到統(tǒng)計(jì)學(xué)的差異顯著水平(P>0.05);胴體重上,GG基因型個(gè)體與AA、AG基因型個(gè)體達(dá)到了統(tǒng)計(jì)學(xué)的極顯著水平(P<0.01);屠宰率指標(biāo)上,AA型個(gè)體與GG型個(gè)體達(dá)到了統(tǒng)計(jì)學(xué)的極顯著水平(P<0.01),AG型個(gè)體與GG型個(gè)體達(dá)到了統(tǒng)計(jì)學(xué)的顯著水平(P<0.05)。在這幾項(xiàng)指標(biāo)中,GG基因型個(gè)體的各指標(biāo)平均數(shù)值普遍地高于其它2種基因型,這說(shuō)明GG基因型在整個(gè)秦川牛群體中處于優(yōu)勢(shì)地位,是優(yōu)勢(shì)基因型,所以在牛的發(fā)育早期,我們應(yīng)盡可能的多選GG基因型個(gè)體留作種用,使整個(gè)牛群具有良好的生長(zhǎng)發(fā)育狀況和較好的胴體品質(zhì),從而加快具有優(yōu)質(zhì)經(jīng)濟(jì)性狀牛種群的建立。
序列表